Tengo 42 años, cáncer de pulmón en estadio IV y ocho buenos meses a mis espaldas. A partir de ahí construyo.

Nunca he fumado. Mi cáncer nace de un accidente genético: dos genes, KIF5B y RET, se fusionaron, y la proteína que sale de esa unión mantiene la célula encendida. Desde febrero de 2026 tomo un tratamiento dirigido contra RET, en comprimidos: un inhibidor de tirosina cinasa (TKI, por sus siglas en inglés). El tumor se ha reducido.

Con todos los fármacos de esta familia pasa lo mismo, tarde o temprano: las células encuentran la manera de esquivarlo. La pregunta no es si ocurrirá. Es cuándo.

Ahora quiero sumar una vacuna personalizada: un preparado que le enseñe a mi sistema inmunitario el fragmento de proteína que solo existe en el tumor. No previene la enfermedad. La hace visible. Y la quiero mientras el tumor sea pequeño. Es mi razonamiento, no una garantía de que vaya a funcionar.

El diseño de mi vacuna está atascado en un solo paso de laboratorio.

Es el paso 5 de diez: demostrar que el péptido elegido se presenta de verdad en la superficie de la célula, y no solo que un algoritmo predice que estará ahí.

El paso 5, por sí solo, no me da una vacuna: después vienen la especificación, la aprobación, la administración y la medición. Pero sin él no puedo decidir qué lleva el vial, y sin esa decisión el resto de la cadena no arranca.

Vean cómo pueden ayudarme

Lo que he sacado de los datos brutos, de un vistazo.

50+ GBdatos brutos de secuenciación de dos laboratorios, 34 GB y 19 GB
3 conjuntos de datosdel segundo laboratorio: exoma de sangre, exoma tumoral y ARN tumoral, con 97,5, 73,9 y 54,4 millones de pares de lecturas
HLA I + IIla clase I, determinada por mí a partir de las lecturas brutas de sangre y confirmada después por un laboratorio acreditado; la clase II, tipificada por ese mismo laboratorio
confirmado

¿Es real la diana, y viene del tumor?

  • El informe de un laboratorio acreditado nombra la unión: KIF5B exón 15 :: RET exón 12.
  • En mi propio análisis está en el marco de lectura, y la cubren entre 27 y 35 lecturas de ARN, según la herramienta.
  • Surgió en el tumor: 104 lecturas que atraviesan la unión frente a 1 en sangre, sin duplicados, es decir, el 10,83 % de las lecturas que cruzan el punto de rotura frente al 0,04 %.
  • En el ARN del segundo laboratorio es, de 26 fusiones, la única de alta confianza. La comprobación de identidad de esa muestra no fue concluyente, así que lo cuento como apoyo, no como prueba.
único, pero cercano

¿Falta el péptido en las proteínas normales?

  • Ninguna coincidencia exacta entre 169.651 secuencias de proteínas humanas de referencia.
  • Otros dos candidatos quedaron eliminados: aparecen también en proteínas humanas normales, como isoformas.
  • Aun así, cada trozo suyo de nueve letras difiere de la secuencia humana normal más cercana en 4 de sus 9 letras como mucho. Si eso significa tolerancia o reactividad cruzada, solo un ensayo puede decirlo.
abierto: el eslabón que falta

¿Lo presentarán de verdad mis células?

  • El laboratorio no ha asignado ninguna molécula de clase II al péptido: no hace predicción de unión para péptidos largos.
  • Dos programas de predicción no se ponen de acuerdo en cuál es, y la unión prevista al HLA cambia de forma marcada con la longitud del péptido.
  • En la molécula DR, la predicción pone la secuencia normal correspondiente al menos al mismo nivel que el péptido de fusión, en las dos ejecuciones; en la molécula DQ, solo cuando el péptido se puntúa sin sus secuencias flanqueantes. Cualquier ensayo tiene que incluir también las secuencias normales.
  • El alelo de clase I que he seguido se conserva en el tumor (razón alélica 0,963, donde 1,0 significa que se conservan las dos copias). Mis alelos candidatos de clase II tampoco muestran desequilibrio, pero esa prueba es más débil y no la doy por cerrada.

Hace falta una medición: minigén + inmunopeptidómica, leídas en las dos moléculas candidatas de clase II, con una versión más corta de 13 letras junto al péptido de 16.

orientativo

¿Está mi sistema inmunitario en condiciones de responder?

  • No es un tumor frío: las señales de linfocitos T están ahí.
  • Frente a los adenocarcinomas de pulmón de una cohorte pública de referencia (TCGA), la señal de los CD8, los linfocitos T citotóxicos, es de baja a media: aproximadamente entre los percentiles 15 y 45.
  • El freno está echado: linfocitos T reguladores aproximadamente en el 5-15 % superior, estroma TGF-beta en el percentil 98-100.
  • Todos estos valores proceden de la biopsia de enero de 2026, tomada antes de cualquier tratamiento.
  • El fragmento de clase I de la unión que mi predicción puso en primer lugar: las herramientas de predicción se dividen sobre él, y en el experimento publicado sobre estos fragmentos los linfocitos T de dos donantes sanos no emparentados, no los míos, no lo reconocieron. Dos de los otros siete sí dieron respuesta en ese mismo experimento. Nada de esto dice si alguno de ellos se presenta.
Lo que me queda

Un péptido de clase II, ninguno de clase I, ninguno de mutaciones puntuales. La secuenciación del ADN tumoral falló por el ADN degradado, así que sigue sin saberse si hay otras dianas.

Qué puedo aportar

Unos 372,8 ng de ARN tumoral, conservados a −80 °C, y más de 50 GB de datos brutos. Un resto de ADN demasiado pequeño para usarlo. De los dos bloques de tejido, uno está vacío y el otro guarda un resto que se consideró demasiado pequeño para examinarlo, así que nada sobre lo que pueda planificar un nuevo experimento con tejido.

confirmado por un laboratorio acreditadoanálisis propio, orientativouna cautela o una contradicción
KIF5B123. . .131415los exones posteriores al 15 no entran en la fusiónRETlos exones 1-11 no entran en la fusión12131415. . .la fusiónARN de mi tumor123. . .131415121314. . .KIF5B exón 15 :: RET exón 12en el marco de lectura34 lecturas de ARN cubren la unión...LKDLAEIGIAVGNNDVK|EDPKWEFPRKNLVLGKTLG...AVGNNDVKEDPKWEFP16 aminoácidos, el único péptido seleccionado por el laboratorio, restringido por HLA de clase II KIF5Bexones 1 ... 15acaba en el 15RETexones 12 ...empieza en el 12la fusión, en el ARN del tumorKIF5B 1-15RET 12-...exón 15 :: exón 12, en el marco de lectura34 lecturas de ARN cubren la unión...LKDLAEIGIAVGNNDVK|EDPKWEFPRKNLVLGKTLG...AVGNNDVKEDPKWEFP16 aminoácidos, el único péptido seleccionadopor el laboratorio; restricción HLA clase II

He buscado la secuencia de 18 aminoácidos que contiene el péptido, letra por letra, en el proteoma humano de referencia: 169.651 secuencias, cero coincidencias. Es una búsqueda exacta, hecha por mí; no es una garantía biológica.

Único no significa lejano, y esa es la parte que no quiero pasar por alto. El péptido nace de la unión de dos proteínas humanas normales, así que cada trozo de nueve letras suyo se parece a una de las dos. Los trozos de los extremos difieren de la proteína de origen en una sola letra. Y en el lado RET no hay una proteína de origen, sino dos: las nueve letras EDPKWEFPR aparecen tal cual tanto en RET como en FGFR2, un receptor de una familia sin relación, en los residuos 713-721 y 470-478 respectivamente (RET P07949, FGFR2 P21802). Así que KEDPKWEFP, el fragmento con la respuesta publicada más clara, está a una sola sustitución de cada una de ellas: de LEDPKWEFP en RET y de PEDPKWEFP en FGFR2. El mejor separado de ambas proteínas de origen difiere en cuatro. Cuatro de nueve es el máximo que permite esta unión, se corte el péptido como se corte: no es una mala decisión de diseño, es una propiedad de la unión. La distancia corta no demuestra que el sistema inmunitario fuera a atacar tejido sano. Deja abiertas exactamente dos posibilidades que solo un ensayo puede separar: tolerancia, es decir, ninguna respuesta, o reactividad cruzada.

La búsqueda no lo encuentra en las proteínas normales. La pregunta de verdad es si la célula lo saca a la vista.

Lo que una célula tiene dentro no se ve desde fuera. La célula corta sus proteínas en fragmentos cortos y sube una parte de ellos a la superficie, sobre las moléculas HLA, que los presentan al sistema inmunitario; los linfocitos T pueden reconocer lo que está expuesto allí. Una vacuna solo tiene sentido si el fragmento con el que entreno a mi sistema inmunitario llega de verdad a presentarse.

  1. Diseño: qué lleva el vial
  2. Fabricación, administración, medición
  3. 1Secuenciaciónhecho
  4. 2Tipificación HLAhecho
  5. 3Qué hay solo en el tumorparcial
  6. 4Qué puede presentarseparcial
  7. 5Prueba de presentaciónsin empezar
  8. 6La especificaciónparcial
  9. 7Fabricaciónsin precio
  10. 8Aprobaciónabierto
  11. 9Vacuna junto al TKIpendiente
  12. 10Mediciónpendiente

Para el paso 7 tengo un calendario, pero no un precio del producto que compraría de verdad: para una vacuna de clase II con un solo péptido, el coste y si hace falta prescripción siguen ambos sin respuesta. Tampoco los pasos 8, 9 y 10 están cerrados: la aprobación exige el dictamen de un comité de ética y un médico dispuesto a prescribirla; la medición exige ensayos de linfocitos T, ADN tumoral circulante y pruebas de imagen.

La fabricación no es el problema. El problema es qué lleva el vial.

El paso 5 tiene un método con nombre propio: la inmunopeptidómica. Se toman células que producen la proteína de fusión, se aíslan sus moléculas HLA, se liberan los péptidos con un lavado ácido y se leen por espectrometría de masas, el instrumento que identifica cada péptido por su masa. No lo que podría presentarse. Lo que se ha presentado.

La predicción propone. Solo la medición confirma.

Hay tres preguntas distintas, y es fácil mezclarlas. ¿Qué se predice que presentará el HLA? Eso lo responde la predicción. ¿Qué se ha encontrado de verdad presentado en las células? Eso lo responde la inmunopeptidómica. ¿A qué reaccionan los linfocitos T? Eso lo responden los ensayos de linfocitos. El paso 5 es la segunda pregunta, la única que puedo cerrar sin tejido y sin que me extraigan linfocitos.

La distancia entre la primera y la tercera está medida. En un proyecto internacional, varios equipos predijeron epítopos, es decir, fragmentos que el sistema inmunitario puede reconocer, a partir de los mismos datos de secuenciación; los 608 péptidos priorizados se ensayaron después para reconocimiento por linfocitos T, en muestras de los mismos pacientes. 37 resultaron inmunogénicos, es decir, el 6 %. El trabajo separa explícitamente los eslabones: primero la presentación en HLA, solo después el reconocimiento. Su filtro de presentación y reconocimiento juntos eliminó el 98 % de los péptidos no inmunogénicos, pero conservó solo el 45 % de los inmunogénicos; esas dos cifras corresponden a los 286 péptidos para los que existían las cinco mediciones de presentación, no a los 608. En una cohorte aparte de 310 péptidos con 4 inmunogénicos, el filtro basado solo en la presentación eliminó el 97 % de los no inmunogénicos y conservó 3 de los 4; al añadir el reconocimiento, la eliminación subió al 99 % y conservó los mismos 3 de 4 (Wells, Cell 2020 ).

Dos límites de ese estudio me importan, y los propios autores los señalan: solo ensayó péptidos de clase I, y solo los que surgen de mutaciones puntuales y de pequeñas inserciones-deleciones. Las proteínas de fusión quedaron fuera, y también toda la rama de clase II. Mi péptido es un péptido de fusión, de clase II. Así que este trabajo me dice cuánto puede alejarse la predicción de la medición; no me dice cuánto se ha alejado la mía.

Un filtro que descarta casi todo el ruido, pero pierde por el camino más de la mitad de la señal, no me dice dónde se rompió la cadena para mi péptido: no reconocido puede significar nunca presentado, o presentado y aun así no visto por ningún linfocito T. Lo que las separa es medir la presentación, es decir, la inmunopeptidómica (Chong, Nat Biotechnol 2022 ). Tampoco ella es infalible: una revisión del método, escrita por quienes lo ejecutan, advierte de que el emparejamiento de los espectros con el enorme espacio de las secuencias no canónicas puede producir, por sí mismo, falsos positivos, y no dice nada sobre la inmunogenicidad. Pero a su pregunta responde midiendo: ¿llega de verdad este fragmento a la superficie?

Por eso insisto en el paso 5: no porque lo cierre todo, sino porque cierra exactamente la pregunta que me tiene parado. Si además mis linfocitos lo ven una vez presentado, esa es otra pregunta: la segunda de las cuatro peticiones del final.

Necesito las células, y ya no me queda tejido. Hay una salida modesta: un minigén, es decir, una secuencia corta de ADN con solo la zona de la unión, introducida en una línea celular con mi tipo HLA. El resultado vale para el modelo celular, no es una medición sobre mi tumor. Pero es el único camino que veo que no gasta tejido.

Para no dar la impresión de que este paso resuelve más de lo que resuelve, esto es lo que queda abierto aunque salga bien. No dice si el péptido se presenta igual en mi tumor de hoy, que lleva ocho meses bajo tratamiento, ni si la proteína entera se procesa como el trozo corto del constructo. No dice si mis linfocitos lo ven, ni si pueden distinguir el fragmento tumoral del casi idéntico de la proteína normal. No dice nada sobre la destrucción del tumor, sobre la seguridad junto al comprimido que tomo, sobre la dosis ni sobre el beneficio clínico. Y un resultado negativo no es prueba de que el péptido no se presente, salvo que el laboratorio muestre qué habría podido detectar: sin el límite de detección, la falta de una señal no es ausencia biológica. El paso 5 no es la aprobación biológica de la fabricación. Es la información sin la cual no puedo elegir qué entra en el vial.

La prueba de presentación, sin tejidominigénADN corto,solo la zona de uniónlínea celularcon mi HLAproduce el fragmentode fusiónaislamiento de HLA,elución ácidalos péptidos se sueltandel HLAespectrometríade masascada péptido,leído por su masaAVGNNDVKEDPKWEFP¿aparece?qué se encontrósobre HLAen el modelo celular La prueba de presentación, sin tejido1minigénADN corto, solo la zona de unión2línea celular con mi HLAlas células producen el fragmento de fusión3aislamiento de HLA, elución ácidalos péptidos se sueltan del HLA4espectrometría de masascada péptido, leído por su masa5qué se encontró sobre HLAen este modelo celular:AVGNNDVKEDPKWEFP ?

El método existe. El tejido sobre el que ejecutarlo, no.

¿Y por qué no mando tejido, sin más?

cilindro 1: 1,5 cmcilindro 2: 0,4 cmdos cilindros, dos bloques de parafina:todo el tejido tumoral que he tenido nunca05101520 mma escala cilindro 1: 1,5 cmcilindro 2: 0,4 cm05101520 mmtodo el tejido tumoral que he tenido nunca
  1. 21.01.2026Biopsia percutánea con aguja gruesa (tru-cut), pulmón izquierdodos cilindros, de 1,5 cm y 0,4 cm; dos bloques de tejido fijado en formol e incluido en parafina (FFPE)
  2. ene. 2026Anatomía patológicaadenocarcinoma; las pruebas rápidas detectan la fusión de RET
  3. may.-jun. 2026Panel de secuenciación de nueva generación (NGS), 1021 genes más ARNKIF5B-RET confirmada; 30 % de células tumorales; profundidad 882x; carga mutacional tumoral (TMB) de 4,12 mutaciones por megabase, baja; microsatélites estables (MSS); el informe no especifica los exones
  4. jul. 2026Evaluación del tejido restantemenos de 1 mm de tumor por bloque
  5. ago. 2026Envío de los dos bloques a un laboratorio comercial alemán, para el diseño de la vacunaexoma de sangre (la parte del ADN que codifica proteínas), exoma tumoral de parafina, transcriptoma de ARN tumoral (los genes que la célula lee de verdad); sin genoma completo
  6. sept. 2026La rama somática, es decir, la parte que busca los cambios aparecidos solo en el tumor, fallasolo el 46,91 % de las regiones codificantes de los genes solicitados alcanza el umbral de al menos 60 lecturas por base
  7. 29.09.2026Los dos bloques me son devueltosel laboratorio devuelve el tejido que había recibido
  8. 05.10.2026Inventario, en la respuesta del laboratoriobloque 1: vacío. Bloque 2: un resto demasiado pequeño para poder examinarlo. ADN tumoral: ~36 ng, insuficiente. ARN tumoral: ~372,8 ng, conservado a -80 °C. El laboratorio escribió el 16 de octubre que guarda este tipo de material 10 años como máximo
46,91%

de las regiones codificantes de los genes solicitados alcanzó el umbral del laboratorio: al menos 60 lecturas por base. El resto se quedó por debajo.

050100%
contenido tumoral 40 %, adecuado ADN suficiente biblioteca correcta secuenciación sin anomalías → ADN tumoral degradado, de los bloques de parafina

El análisis no fracasó por falta de tejido. Fracasó porque el ADN de la parafina estaba degradado.

Que no se hayan encontrado mutaciones no significa que no haya mutaciones. Significa que la pregunta se quedó sin respuesta.

Y ya no me queda ninguna lesión que se pueda biopsiar. El tratamiento ha funcionado demasiado bien. Es el mejor problema que se puede tener y, al mismo tiempo, un muro.

Sobre los tipos de vacunas personalizadas escribí en la primera parte , y sobre el papel del tejido, en la segunda parte .

Con lo que cuento hoy.

50+ GBdatos brutos de secuenciación de dos laboratorios: 34 GB del primero y 19 GB del segundo (6 archivos FASTQ más 2 archivos de regiones diana, sumas de verificación md5 comprobadas, 8 de 8)
97.487.698pares de lecturas, exoma de sangre (ADN normal, como referencia)
73.909.094pares de lecturas, exoma tumoral; 54.400.099, ARN tumoral; sin identificadores moleculares únicos (UMI)
HLA I + IItipificados por un laboratorio acreditado: las moléculas que deciden qué fragmentos pueden presentarse
K15;R12la unión exacta, leída por mí en los datos brutos; un informe acreditado fechado el 28.09.2026, recibido el 16.10.2026, la confirma
~372,8 ng ARNextracto de ARN tumoral a -80 °C; el resto de tejido del bloque 2 se calificó de demasiado pequeño para examinarlo
1 péptidoAVGNNDVKEDPKWEFP, 16 aminoácidos, clase II, sin alelo asignado
0péptidos de clase I que cumplan los criterios; cero péptidos de mutaciones puntuales o de inserciones-deleciones

Esperaba de 20 a 24 péptidos. Salió uno.

Lo que he calculado por mi cuenta.

He pasado los más de 50 GB de datos brutos de los dos laboratorios por herramientas públicas de bioinformática, con modelos de IA para ejecutar, entender y comprobar cada paso. Todo lo que sigue es análisis propio, de carácter orientativo, y necesita confirmación independiente.

  1. ¿Cuál es la unión exacta?lectura directa en el alineamiento del ARN bruto, además de los resultados de STAR-Fusion y FusionInspector34lecturas únicas contienen exactamente las 30 bases de la unión (STAR-Fusion: 27 lecturas de unión; FusionInspector: 35). KIF5B exón 15 :: RET exón 12, en el marco de lectura. El laboratorio no había informado de los exones.
  2. ¿Surgió en el tumor, o es heredada?recuento de las lecturas divididas en el punto de rotura del ADN, tumor frente a sangre104 / 1lecturas divididas, sin duplicados: 104 en el ADN tumoral frente a 1 en sangre, es decir, el 10,83 % de las lecturas que cruzan el punto de rotura frente al 0,04 %. Una búsqueda aparte, sin alineamiento, de la secuencia exacta de la unión en las lecturas brutas de sangre no encontró ninguna.
  3. ¿Se confirma en el segundo conjunto de datos?Arriba 2.5.1, sobre el ARN tumoral del otro laboratorio1 de 26la única fusión de alta confianza es KIF5B-RET, en el marco de lectura; la misma secuencia de 30 bases aparece en 20 lecturas, 17 pares. Con una salvedad que repito allí donde uso este ARN: la comprobación de que la muestra es realmente mía no fue concluyente. De 227 posiciones informativas, solo 134 coinciden entre las dos muestras, es decir, el 59 %, donde una comprobación del mismo paciente debería ser casi completa. Los controles cuadran, así que no es prueba de que se confundieran los tubos, pero tampoco es un aprobado. Es una corroboración técnica de carácter orientativo sobre una fusión ya confirmada en otro sitio, no una confirmación dada por ese laboratorio.
  4. ¿Qué HLA tengo?OptiType y T1K, sobre las lecturas brutas de sangre6 de 6alelos de clase I. Dos meses después, el laboratorio acreditado informó exactamente los mismos seis.
  5. ¿Ha perdido el tumor el alelo HLA de clase I que sigo?desequilibrio alélico, exoma tumoral frente a exoma de sangre0,963la razón alélica (intervalo de confianza del 95 %: 0,819-1,132): el alelo de clase I seguido se conserva en el tumor. Una pérdida en todas las células (clonal) habría dado ~0,76 a la pureza estimada del 24 %; una solo en algunas (subclonal) no queda excluida. El resultado se refiere a la clase I, no al alelo de clase II que está detrás del péptido seleccionado.
  6. ¿Se unen los fragmentos de la unión a mi HLA?NetMHCpan-4.1 (elución y afinidad), NetMHCstabpan, MixMHCpred 3.0, sobre mis alelos reales1solo fragmento de 9 aminoácidos se predice con unión fuerte: VKEDPKWEF, rango 0,39 % en el mejor alelo de clase I. Sobre ese mismo fragmento, los cuatro indicadores se dividen en dos: el rango de elución y MixMHCpred (0,30 %) lo dan como de unión fuerte, mientras que la afinidad prevista (IC50 12.683 nM) y la estabilidad prevista (semivida 0,13 h) no.
  7. ¿Qué dicen las mediciones ya publicadas?consulta a IEDB sobre las secuencias exactas; el estudio publicado usó docking, MHCNuggets y MixMHCpred 2, y la respuesta la midió por ELISpot, un ensayo que cuenta los linfocitos T que reaccionan a un péptido2 de 8fragmentos que atraviesan la unión dieron respuesta. KEDPKWEFP: positivo, en uno de los dos donantes. DVKEDPKWE: registrado en la base como positivo débil, y el propio texto del estudio dice que el segundo donante respondió a él: es el más débil de los dos resultados, no un resultado negativo. VKEDPKWEF, el que mi predicción puso en primer lugar: negativo en ambos donantes. Los otros cinco salieron negativos, uno de ellos con interferón elevado en un solo donante, sin confirmarse en todas las réplicas. Negativos también los dos fragmentos nativos, uno de cada gen de origen, incluidos al lado como controles: y eso es justo la parte que sostiene que la señal viene de la unión y no de los genes de los que está hecha.
  8. ¿El péptido es solo del tumor?búsqueda exacta en el proteoma humano de referencia, UniProt UP000005640 con isoformas, y en RefSeq0coincidencias en el proteoma de referencia, 169.651 secuencias; y 0 coincidencias exactas para los ocho núcleos de nueve letras más el péptido completo de 16 aminoácidos, en 197.903 proteínas de RefSeq. Otros dos candidatos quedaron eliminados: sus secuencias existen en isoformas de proteínas normales. Un tercero, procedente de una unión de empalme de ERBB3, superó el mismo control y lo conservo como segundo péptido opcional -- pero solo aparece a nivel de trazas en los datos y su traducción a proteína no está demostrada. Además queda más cerca de lo propio que el péptido de fusión: la proteína normal se diferencia de él por una deleción de dos residuos, con los dos flancos idénticos a lo propio. Así que no es la base del constructo.
  9. ¿Se sostiene la elección del laboratorio?NetMHCIIpan y MixMHC2pred, sobre mis alelos de clase II0,99el rango del mejor núcleo de unión en el primer programa, es decir, de la porción del péptido que entra de verdad en el surco de la molécula HLA: unión fuerte. El segundo programa, con los mismos datos, lo baja a 21,8 y pone en cabeza otra molécula de clase II. Ese 21,8 y el 17,2 de más abajo son el mismo programa sobre la misma molécula, calculado de dos maneras: 21,8 con las secuencias naturales que flanquean el péptido, 17,2 con las 16 letras solas. La proteína normal también compite bien, pero no en todas partes: en la molécula DR el trozo correspondiente se une igual de bien o mejor que el péptido de fusión, en las dos ejecuciones, mientras que en la molécula DQ eso solo se sostiene cuando el péptido se puntúa sin sus secuencias flanqueantes. Y la longitud cambia el resultado: calculado de la misma manera, el péptido acortado a 13 aminoácidos sube del rango 17,2 al 2,18. Los rangos de los dos programas no están en la misma escala, así que comparo el orden, no los valores. Lo que queda en pie: los dos modelos eligen la misma porción del péptido, pero no se ponen de acuerdo en qué molécula lo presenta ni con qué longitud. Ninguno es una prueba de que el péptido se presente.
  10. ¿Cómo es la inmunidad dentro del tumor?quanTIseq, ESTIMATE, MCP-counter, sobre el ARN tumoralno es fríopero tiene el freno echado: CD8 bajos, reguladores altos, estroma TGF-beta cerca del máximo.
  11. Pureza y número de copiasFACETS, CNVkit, sobre el exoma tumoral~0,24pureza estimada (ajuste alternativo 0,36); una ganancia regional de copias en un gen, 8 u 11 copias según el ajuste que se tome. Exploratorio, por debajo del umbral de calidad. Para esta única biopsia existen tres estimaciones del contenido tumoral: 30 % del panel NGS, 40 % del control de calidad del segundo laboratorio, ~24 % de mi propio ajuste. Vienen de ensayos distintos sobre alícuotas distintas; donde importa uso la más baja, porque hace cada resultado más difícil de sostener.
  12. ¿Cómo metabolizo los medicamentos?variantes farmacogenómicas del exoma de sangre2resultados con relevancia clínica, anotados ahora en mi tarjeta de emergencia. Nada que afecte al tratamiento actual.
KIF5BRETIAVGNNDVKEDPKWEFPRKla unión3 de los 8 fragmentos de la uniónpredicho sobre mis alelosmedido: ELISpot, 2 donantesDVKEDPKWEno se unepositivo débilVKEDPKWEFunión fuerte, rango 0,39 %negativoKEDPKWEFPno se unepositivo, 1 de 2 donantesVKEDPKWEF, cuatro predicciones sobre el mismo fragmento:elución, rango 0,39 % y MixMHCpred, rango 0,30 % (ambos: unión fuerte) ·afinidad IC50 12.683 nM (no se une) · semivida prevista con HLA 0,13 hcuadrado: predicción calculada por mí (NetMHCpan-4.1, NetMHCstabpan, MixMHCpred 3.0)círculo: respuesta T medida por ELISpot, en dos donantes (IEDB, Castillo 2025) KIF5BRETIAVGNNDVKEDPKWEFPRKDVKEDPKWEpredicho: no se unemedido: positivo débilVKEDPKWEFpredicho: unión fuertemedido: negativoKEDPKWEFPpredicho: no se unemedido: positivo, 1/2 donantescuadrado: predicción calculada por mícírculo: respuesta T medida, ELISpot en dosdonantes (IEDB, Castillo 2025)

El fragmento que mi predicción puso en primer lugar es el que dio negativo en la medición.

El estudio usó herramientas de predicción distintas de las mías (Castillo, Front Immunol 2025 ). Pero lo que midió es menos de lo que parece a primera vista: añadió los péptidos desde fuera a células de dos donantes sanos compatibles y contó los linfocitos que reaccionaron. No midió la unión física sobre mis moléculas. No midió si una célula fabrica y saca por sí sola el fragmento a la superficie. No midió nada en mí. Hasta la molécula sobre la que se presentarían los fragmentos es, en la propia ficha del estudio, una predicción. El umbral para declarar una respuesta estaba fijado de antemano y no es indulgente: más de 20 spots por millón de células y un recuento medio de spots al menos tres veces el del control sin estimular. Junto a los fragmentos de la unión pasó un péptido estandarizado de nueve letras, sin relevancia biológica, y un pool de 42 péptidos de citomegalovirus. Lo que el artículo no publica son precisamente los recuentos de spots, así que de él no se puede leer cuánto superaron los fragmentos positivos esa línea de tres veces. Eso es un argumento para un experimento mejor controlado y reportado por completo, no para descartar el resultado.

Así que no puedo decir qué fragmento es el bueno. Lo que sí puedo decir es más estrecho: el estudio probó ocho fragmentos que atraviesan la unión y publicó un solo resultado para cada uno, así que no hay un orden propio que invertir; pero el fragmento que mi predicción puso en primer lugar dio negativo en los dos donantes, y de los dos que sí respondieron, uno es un fragmento que yo había dado como no unido. Con eso basta para descalificar la predicción como único criterio de elección. Y hay otra razón para no quedarme sin más con el fragmento que mejor resultado dio: es también el más cercano a la proteína normal de todo el conjunto, a una sola letra de distancia, y no de una proteína normal, sino de dos. La señal experimental más fuerte descansa sobre el margen de seguridad más estrecho. Esa tensión no la resuelve ningún cálculo, y yo no voy a resolverla eligiendo a mi favorito.

Una cosa más, para que no se pierda por el camino: estos fragmentos son de clase I, una rama distinta del péptido de clase II elegido por el laboratorio. Sus resultados no dicen nada sobre él, ni para bien ni para mal. El desacuerdo entre cálculo y medición no es ruido, y solo un laboratorio puede zanjarlo.

Una parte de la predicción sí es un argumento para hacer esa medición, en el lado de clase I, y se divide en dos. La entrega pinta bien: el transportador TAP, que lleva un fragmento hasta donde se cargan las moléculas HLA, da al fragmento de la unión VKEDPKWEF una puntuación de +1,025, el 4.º de los 89 fragmentos de nueve letras de la ventana y el mejor de los ocho que atraviesan la unión; la puntuación combinada de transporte y corte sale también 4.ª. El corte es otra historia: en el componente proteasómico por sí solo, el mismo fragmento queda a media tabla, el 29.º de 89, y el corte predicho más fuerte del vecindario cae justo sobre la unión misma, que es una forma de destruir el fragmento en lugar de liberarlo. Lo que tienen a favor estas dos puntuaciones es que no dependen del alelo HLA que se suponga, así que la incertidumbre sobre mis alelos no las toca. En conjunto: la predicción dice que el trozo tiene buenas probabilidades de ser entregado si sobrevive al corte, y lo que queda incierto es si se recorta intacto y luego permanece unido lo suficiente para presentarse. Eso solo lo puede zanjar la medición. Esos dos pasos pertenecen a la ruta de clase I, porque las moléculas de clase II se cargan por otro camino: es, por tanto, un elemento favorable de la predicción sobre la zona de la unión, no un veredicto sobre el péptido de clase II.

Lo que la IA no pudo hacer: reparar los datos dañados. Ningún algoritmo reconstruye lecturas que nunca se produjeron.

  • Linfocitos T CD8 citotóxicoslos que matan la célula tumoralde bajo a medio: aproximadamente percentil 15-45
  • Linfocitos T reguladoreslos que frenan la respuestasobrerrepresentados: aproximadamente en el 5-15 % superior
  • Estroma TGF-beta, fibroblastosel muro alrededor del tumorpercentil 98-100
0255075percentil 100

No es un tumor frío. Pero tiene el freno echado.

Qué son estas cifras y qué no son: posiciones relativas de señales del ARN tumoral, comparadas con cohortes públicas del mismo tipo de cáncer. No son recuentos de células, no son tinciones en un portaobjetos y no dicen dónde se sitúan las células dentro del tumor. Proceden de la misma muestra de ARN cuya comprobación de identidad no fue concluyente y son de antes del tratamiento.

Se puede. Ya se ha hecho.

Un equipo desarrolló una vacuna sobre la unión de una fusión, en un paciente con otro tipo de cáncer, demostró por espectrometría de masas que el péptido se presenta de forma natural y siguió al paciente durante más de 21 meses sin recaída (Bauer, Nat Commun 2022 ). En melanoma operado, una vacuna de ARNm personalizada añadida a un inhibidor de puntos de control inmunitario (una inmunoterapia que suelta el freno de los linfocitos T) dio, en la actualización a 5 años, un hazard ratio (HR, cociente de riesgos) de 0,510 para la supervivencia libre de recurrencia (KEYNOTE-942, J Clin Oncol 2026 ). Y la vía en sí existe sobre el papel: la vacunación multipeptídica personalizada está registrada como acceso ampliado, con el estado “disponible”, en un centro universitario alemán (NCT05014607 ). El acceso ampliado no es un ensayo clínico: es una vía por paciente nominado. Y es el mismo programa universitario alemán que enumero más abajo como bloqueado para mí: exige tejido congelado en fresco, que no tengo, y no fabrica vacunas contra fusiones oncogénicas, con una sola excepción, la vacuna sobre la unión de una fusión con la que abre esta sección, en otro tipo de cáncer. Es, por tanto, una puerta que no puedo cruzar, y aun así la prueba de que la puerta está construida.

Otro cáncer, otra situación, otra vacuna. Mi enfermedad está avanzada y no se ha operado; esa cifra no es la mía. Pero el mecanismo es real y está medido.

Y una unión como la mía ya ha sido reconocida una vez por linfocitos T humanos. En un paciente con carcinoma anaplásico de tiroides portador de una fusión CCDC6-RET, los linfocitos extraídos del interior del tumor reaccionaron al neoantígeno de la fusión; la rotura del lado RET es la misma rotura en el exón 12 que la mía, y el trozo de 25 letras que probaron es idéntico al mío en 14 de sus 25 posiciones, con las 11 diferencias cayendo todas en la mitad del compañero (Garza, J Clin Endocrinol Metab 2026 ). Tres cosas viajan con eso, y ninguna es pequeña: es otro cáncer, es otro experimento, linfocitos que ya estaban dentro de un tumor y no una vacuna administrada a nadie, y el umbral para declarar respuesta fue un aumento de 1,5 veces en una sola réplica, más débil que el umbral de tres veces del estudio pulmonar de más arriba. Tampoco dice en qué mitad se encuentra el trozo reactivo, en el tramo RET que compartimos o en la mitad del compañero que no compartimos: nadie lo ha localizado. Lo que sí dice es que no es una observación aislada en un único trabajo.

A quién he acudido.

La medición en sí no es hipotética, y en esto quiero ser exacto más que dramático. La inmunopeptidómica se ha publicado sobre muestras de unas pocas decenas de miligramos, con un paso de movilidad iónica construido justo para el problema de tener demasiado poco material, y con cada péptido candidato confirmado después frente a un estándar sintético; el mismo trabajo corrió el método también sobre líneas celulares, que es la vía que me queda abierta (Minegishi, Commun Biol 2022 ). El obstáculo no es, por tanto, que nadie sepa cómo hacerlo. Es que no he encontrado ese paso ofrecido por separado, a alguien que llega con datos en lugar de tejido, y los grupos que lo publican lo corren dentro de sus propias cadenas. Una solicitud salió el 25 de octubre y sigue sin respuesta. No la anoto como vía hasta que alguien conteste.

Cómo trabaja un laboratorio grande: flujo completo, del tejido al productoúnica entradatejidosecuenciaciónanálisisselección de péptidosfabricaciónproductoel paso que busco: la prueba de presentaciónno lo he encontrado como servicio independienteyo: datos brutos, unión, HLA, un péptidoARN a -80 °C, un resto de tejido mínimopara los datos no hay entrada Cómo trabaja un laboratorio grandetejidoúnica entradasecuenciaciónanálisisselección de péptidoslo que busco: la prueba de presentaciónno lo he encontrado como servicio apartefabricaciónproductoyo: datos brutos, unión, HLA, un péptidopara los datos no hay entrada
  • Un centro universitario alemán, programa de vacunas peptídicasExigen tejido fresco congelado. No hacen vacunas sobre fusiones oncogénicas, con una sola excepción, en otro tipo de cáncer.bloqueado
  • Un laboratorio comercial alemánSí, con condiciones, en dos etapas: diagnóstico y después fabricación. No trabajan con datos ajenos: necesitan los suyos. El diagnóstico fracasó por ADN degradado; me devolvieron el dinero; aun así, salió un péptido.parcial
  • Dos centros de JapónPueden sintetizar péptidos a partir de una secuencia dada. El análisis de neoantígenos está externalizado y exige tejido, no datos. Con uno de ellos, la conversación sigue abierta.abierto
  • Un centro académico de Estados UnidosPrepara ensayos para pacientes individuales, posiblemente en 2027, si consigue financiación. No es un compromiso.quizá 2027
  • Empresas de biotecnología, un hospital universitario europeoDijeron que no, o no tienen autorización legal para tratar a pacientes individuales.cerrado
  • Un proveedor de servicios de bioinformáticaNo acepta proyectos solo de análisis.cerrado

Los laboratorios grandes reciben tejido y entregan un producto. Yo solo necesito una pieza de en medio.

La decisión es mía. Y esperar no la mejora.

El tejido no vuelve a crecer en la parafina. Los datos no mejoran solos. La pregunta es sencilla: ¿construyo la vacuna con lo que tengo, o no?

Si actúo ahora

  • El péptido está restringido por clase II, y el laboratorio no le ha asignado ningún alelo.
  • No existe ninguna prueba de que se presente en mis células.
  • Cero péptidos de clase I: la rama que mata directamente la célula queda sin cubrir.
  • El coste es alto y lo pago yo solo.
  • Todos los datos proceden de la biopsia previa al tratamiento. El tumor de hoy puede ser distinto.

Si no actúo

  • La ventana inmunológica favorable es ahora, con el tumor pequeño, y no se repite.
  • Cuando la enfermedad progrese, las células que escapan pueden dejar de depender de la fusión: la diana de hoy puede no ser la de entonces.
  • No tengo ninguna lesión que volver a biopsiar. No se puede volver a obtener nada.
  • De la decisión al vial pasan unos 4-5 meses: el único presupuesto escrito que tengo es de 4-6 semanas de diseño más 14-16 semanas de fabricación, es decir, 18-22 semanas en total.

Qué reduciría el riesgo sin perder la ventana

  • Medir la unión del péptido seleccionado a mis moléculas candidatas de clase II, con la secuencia normal en la misma placa.
  • La confirmación independiente de la unión a partir del ARN ya almacenado. No consume tejido.
  • El minigén más la inmunopeptidómica: no da una vacuna, pero traslada una parte de la decisión de la predicción a la medición.
  • Comprobar los fragmentos con respuesta T medida sobre la misma fusión, en mis alelos, con los trozos correspondientes de las proteínas normales en la misma placa.
si decido hoyla decisióndiseño + fabricaciónvacuna lista, a ~4-5 meses de la decisiónhoy+4-5 mesessi espero a la progresióncuánto falta hasta entonces: no se sabeprogresión, momento desconocido:solo aquí empiezan los ~4-5 mesesdiseño + fabricaciónvacuna, solo entonces si decido hoyla decisión, hoydiseño + fabricaciónvacuna lista, a ~4-5 mesesde la decisiónsi espero a la progresióncuánto falta: no se sabeprogresión, momento desconocido:solo aquí empiezan los ~4-5 mesesdiseño + fabricaciónvacuna lista, solo entonces

Hay algo más que no quiero ocultar. El clon de células que porta la fusión es, muy probablemente, la población más grande de mi tumor. Si hay además otras dianas útiles, no lo sé: el análisis que podía responderlo es justo el que falló.

Estas herramientas me dieron lo que el laboratorio no me había dado. Y se paran justo donde importa.

Para la mayoría, la IA es un chat. Para mí son dos herramientas que pago mes a mes: Claude, de Anthropic, y Codex, de OpenAI. Con ellas he ejecutado código, he trabajado con más de 50 GB de datos de secuenciación y he puesto a un modelo a revisar el trabajo del otro. Lo difícil no es obtener una respuesta, sino saber cuándo es lo bastante buena para actuar en consecuencia: cada afirmación ligada a una fuente, cada cifra recalculada, cada conclusión revisada por el segundo modelo.

Esto es lo que salió cuando tuve acceso.

K15;R12la unión, leída en el ARN bruto
6 de 6alelos HLA de clase I, confirmados después por el laboratorio acreditado
1 aleloasumido por error; lo detecté cuando ya se había colado en los cálculos
2 péptidoseliminados: aparecen también en proteínas humanas normales
antesla contradicción entre mi predicción y las mediciones publicadas salió a la luz antes de fabricar nada
2resultados farmacogenómicos, en mi tarjeta de emergencia

Todo son análisis propios, de carácter orientativo; las confirmaciones acreditadas llegaron por separado.

A Anthropic y a OpenAI.

Problema 1

Los límites en medicina y biología me frenan justo donde más necesito estas herramientas.

Los modelos están diseñados para ser prudentes con la interpretación médica. Para un usuario cualquiera, es razonable. En mi caso, esa prudencia cae justo sobre el paso que ha producido todo lo que he contado hasta aquí: interpretar mis propios resultados y relacionarlos con casos publicados parecidos al mío, incluso por analogía con diagnósticos cercanos.

No quiero que me digan qué tratamiento tomar. Quiero poder trabajar con mis propios datos. Mientras se escribía este artículo, un filtro automático de seguridad cortó a mitad de frase una respuesta que resumía mis propios resultados moleculares.

Problema 2

Los límites de uso cortan el análisis a medias.

Pago las dos herramientas mes a mes. Y aun así me he quedado, varias veces, sin acceso en mitad del análisis, al llegar al límite semanal.

No es una queja de consumidor. El análisis se detiene y se reanuda días después. Ese es el coste, y se mide en tiempo.

La tecnología existe. Pero no puedo usarla justo donde la necesito.

Necesito ayuda ahora, no cuando la enfermedad progrese.

Ayúdenme con cuatro cosas, en el orden en que me abren el camino. La cuarta pesa tanto como las tres primeras.

  1. 1

    Demuestren que el péptido se presenta

    Un minigén con la zona de la unión, expresado en una línea celular que porte mis moléculas de clase II, e inmunopeptidómica sobre ella. Con los controles sin los cuales el resultado no se puede leer: vector vacío, constructos con la secuencia normal de cada uno de los dos genes, y la condición con y sin la señal inflamatoria que aumenta la presentación. El péptido es de clase II, así que importa también sobre qué tipo de célula medimos, tumoral o célula presentadora profesional, y cuál de las dos moléculas candidatas lo presenta: ahí es donde discrepan los dos programas de predicción. Díganme también qué límite de detección tiene el método en su laboratorio. El eslabón que falta en toda la cadena.

  2. 2

    Midan la respuesta de los linfocitos T, en las dos clases

    Sobre la misma fusión, dos fragmentos de clase I ya han dado una respuesta medida de linfocitos T, uno con claridad y otro débilmente, cada uno en uno de dos donantes sanos y ninguno en mí. Quiero saber si alguno de los dos funciona también en mí. Y quiero el mismo ensayo sobre el péptido principal, el de clase II, con mis linfocitos: nadie ha comprobado todavía si mi repertorio lo ve, y sin eso no se sabe si una vacuna prendería en mí. En la misma placa, sin excepción, los trozos correspondientes de las proteínas normales: si no, una respuesta positiva no se distingue de una contra mi tejido sano.

  3. 3

    Definan la especificación final de la vacuna

    Qué entra, en qué formato, con qué adyuvante (la sustancia añadida para amplificar la respuesta inmunitaria), en qué dosis, con qué pauta. A partir de lo que tengo.

  4. 4

    Díganme qué se me escapa

    Un error en mi razonamiento, o un paso en el que no he pensado, vale para mí tanto como un sí. La pregunta sigue abierta, y va en serio.

Escríbanme

Los datos brutos, más de 50 GB, y los informes completos están a disposición de cualquier equipo que pueda ayudar. El extracto de ARN tumoral, unos 372,8 ng a −80 °C, está en el laboratorio que lo secuenció; si puede enviarse a otro equipo, y cómo, es una de las preguntas que dejo sobre la mesa. Tejido utilizable no hay: un bloque está vacío, el otro tiene un resto que el laboratorio calificó de demasiado pequeño para examinarlo, y ningún patólogo independiente lo ha medido. Por su parte, el primer paso es escribirme.

El contenido de este artículo tiene fines exclusivamente informativos y no constituye asesoramiento médico. Consulta cualquier decisión médica con tu oncólogo. Si tienes síntomas urgentes, contacta inmediatamente a un médico.

Todo lo marcado como calculado por mí es análisis propio, de carácter orientativo, y necesita confirmación independiente. No sustituye a un resultado de laboratorio. Los resultados acreditados se indican como tales.